اکثر مکاتبات کومش از طریق ایمیل سایت می باشد.
لطفا Spam ایمیل خود را نیز چک نمایید.
   [صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: جلد 23، شماره 5 - ( مهر و آبان 1400 ) ::
جلد 23 شماره 5 صفحات 548-555 برگشت به فهرست نسخه ها
تحلیل بعد فرکتال و نقشه‌برداری توپوگرافی سطحی به منظور بررسی اثرات درمانی پرتوهای لیزر کم‌توان بر رفتار فیزیکی سلول‌های استئوسارکوما رده MG-63
امین براتی شورچه ، علیرضا محمدکریم ، مجید جدیدی ، مرجان بهرامی نسب ، حمیدرضا ثامنی
چکیده:   (229 مشاهده)
هدف: مطالعات گذشته نشان داده‌اند پرتوهای لیزر کم‌توان در مدولاسیون رفتار سلول‌های استئوسارکومای انسانی نقش ایفا نموده و منجر به تغییراتی در تکثیر، تمایز و چسبندگی سلول‌ها می‌شود. هدف از این مطالعه بررسی اثر پرتوهای لیزر کم‌توان بر رفتار فیزیکی سلول‌های استئوسارکوما مبتنی بر توپوگرافی سطح و تحلیل بعد فرکتال می‌باشد.
مواد و روشها: سلول‌های استئوسارکوما رده MG-63 در محیط DMEM-F12 حاوی %10 FBS کشت داده شدند و پس از رسیدن به تراکم %80 در چهارمین پاساژ تابش لیزر انجام گردید. لیرزهای 532 نانومتر با توان 25 میلی‌وات، 650 نانومتر با توان‌های 3 و 150 میلی‌وات و 780 نانومتر با توان 70 میلی‌وات به مدت 8 دقیقه بهره‌برداری شدند و پس از 72 ساعت تکثیر سلول‌ها بررسی شد. با نقشه‌برداری توپوگرافی سطح توسط میکروسکوپ نیروی اتمی و تصویربرداری کانفوکال تغییرات ابعاد سلول‌ها در سه بعد تعیین گردید و با پردازش تصاویر کانفوکال، آنالیز بعد فرکتال انجام شد.
یافتهها: تابش لیزر تغییرات معناداری در پارامترهای تکثیر، ارتفاع، محیط و مساحت سلول‌ها ایجاد می‌نماید. هم‌چنین در بعد فرکتال سلول‌ها در تمامی لیزرها به غیر از توان 3 میلی‌وات نسبت به سلول‌های گروه کنترل تغییر معناداری ایجاد به وجود می‌آید.
نتیجهگیری: تحلیل طیف فرکتال در کنار بررسی سه بعدی تغییرات ابعاد سلول‌ها می‌تواند به عنوان یک شاخص کمکی در پیش‌بینی پاسخ سلول‌های استئوسارکوما به درمان با پرتوهای لیزری کم‌توان ارزیابی شود.
 
واژه‌های کلیدی: درمان با لیزر کم توان، استئوسارکوما، نقشه‌برداری توپوگرافی سطحی، فرکتال
متن کامل [PDF 889 kb]   (85 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: 1399/10/15 | پذیرش: 1400/2/21 | انتشار: 1400/7/6
فهرست منابع
1. [1] Duarte FJ, Hillman LW. Dye laser principles: With applications. Boston, Mass: Academic Press; 1990.
2. [2] Duarte FJ. Tunable laser Applications. 2016. [DOI:10.1201/b19508]
3. [3] Feliks Przylipiak A, Galicka E, Donejko M, Niczyporuk M, Przylipiak J. Acomparative study of internal laser-assisted and conventional liposuction: A look at the influence of drugs and major surgery on laboratory postoperative values. Drug Des Dev Ther 2013; 7: 1195-1200. [DOI:10.2147/DDDT.S50828] [PMID] [PMCID]
4. [4] Lasers for medical applications: Woodhead Publishing Limited; 2013.
5. [5] Duarte FJ. Tunable laser Applications. 2009. [DOI:10.1201/9781420060584]
6. [6] Peng Q, Juzeniene A, Chen J, Svaasand L, Warloe T, Giercksky KE, Moan J. Lasers Medicine. Rep Prog Phys 2008; 71: 05670. [DOI:10.1088/0034-4885/71/5/056701]
7. [7] Duarte FJ, Hillman LW, Liao PF, Kelley P. Dye Laser Principles: With Applications. 2014.
8. [8] Ateş GB, Ak A, Garipcan B, Yüksel Ş, Gülsoy M, editors. Controversial effects of low level laser irradiation on the proliferation of human osteoblasts. Mechanisms for Low-Light Therapy X; International Society for Optics and Photonics 2015.
9. [9] Sonis ST, Hashemi S, Epstein JB, Nair RG, Raber-Durlacher JE. Could the biological robustness of low level laser therapy (Photobiomodulation) impact its use in the management of mucositis in head and neck cancer patients. Oral Oncol 2016; 54: 7-14. [DOI:10.1016/j.oraloncology.2016.01.005] [PMID]
10. [10] Laakso L, Claudia Renno A, McDonnell P, Parizotto N. The effects of laser irradiation on proliferation in osteosarcoma cell lines (MG63 and U2OS). 2007.
11. [11] Shamsi F. Nanotechnology application in cancer treatment. Koomesh 2019; 21: 579-589. (Persian).
12. [12] Ghodrati Z, Divsalar A. Biological properties, therapeutic and diagnostic applications of Samarium and Samarium nanoparticles. Koomesh 2021; 23: 20-38. (Persian). [DOI:10.29252/koomesh.23.1.20]
13. [13] Lizarelli RF, Lamano-Carvalho TL, Brentegani LG. Histometrical evaluation of the healing of the dental alveolus in rats after irradiation with a low-powered GaAlAs laser. International Soc Opt Photo 1999; 3593: 49-56. [DOI:10.1117/12.348360]
14. [14] Ueda Y, Shimizu N. Effects of pulse frequency of low-level laser therapy (LLLT) on bone nodule formation in rat calvarial cells. J Clin Laser Med Surg 2003; 21: 271-277. [DOI:10.1089/104454703322564479] [PMID]
15. [15] Ozawa Y, Shimizu N, Mishima H, Kariya G, Yamaguchi M, Takiguchi H, et al. Stimulatory effects of low-power laser irradiation on bone formation in vitro. Int Soc Opt Photo 1995; pp: 281-288. [DOI:10.1117/12.207040]
16. [16] Renno AC, McDonnell PA, Crovace MC, Zanotto ED, Laakso L. Effect of 830 nm laser phototherapy on osteoblasts grown in vitro on Biosilicate scaffolds. Photomed Laser Surg 2010; 28: 131-133. [DOI:10.1089/pho.2009.2487] [PMID]
17. [17] Amid R, Kadkhodazadeh M, Ahsaie MG, Hakakzadeh A. Effect of low level laser therapy on proliferation and differentiation of the cells contributing in bone regeneration. J Lasers Med Sci 2014; 5: 70-163.
18. [18] Khadra M, Rønold HJ, Lyngstadaas SP, Ellingsen JE, Haanæs HR. Low-level laser therapy stimulates bone-implant interaction: An experimental study in rabbits. Clin Oral Implant Res 2004; 15: 325-332. [DOI:10.1111/j.1600-0501.2004.00994.x] [PMID]
19. [19] Silva Júnior AN, Pinheiro AL, Oliveira MG, Weismann R, Pedreira Ramalho LM, Amadei Nicolau R. Computerized morphometric assessment of the effect of low-level laser therapy on bone repair: An experimental animal study. J Clin Laser Med Surg 2002; 20: 70-83. [DOI:10.1089/104454702753768061] [PMID]
20. [20] Torricelli P, Giavaresi G, Fini M, Guzzardella GA, Morrone G, Carpi A, Giardino R. Laser biostimulation of cartilage: In vitro evaluation. Biomed Pharmacother 2001; 55: 117-120. [DOI:10.1016/S0753-3322(00)00025-1]
21. [21] Ueda Y, Shimizu N. Pulse irradiation of low-power laser stimulates bone nodule formation. J Oral Sci 2001; 43: 55-60. [DOI:10.2334/josnusd.43.55] [PMID]
22. [22] Crisan L, Soritau O, Baciut M, Baciut G, Crisan BV. The influence of laser radiation on human osteoblasts cultured on nanostructured composite substrates. Clujul Med 2015; 88: 224-32. [DOI:10.15386/cjmed-433] [PMID] [PMCID]
23. [23] Huertas RM, Luna-Bertos ED, Ramos-Torrecillas J, Leyva FM, Ruiz C, Garcia-Martinez O. Effect and clinical implications of the low-energy diode laser on bone cell proliferation. Biol Res Nurs 2014; 16: 191-196. [DOI:10.1177/1099800413482695] [PMID]
24. [24] Bloise N, Ceccarelli G, Minzioni P, Vercellino M, Benedetti L, De Angelis MG, et al. Investigation of low-level laser therapy potentiality on proliferation and differentiation of human osteoblast-like cells in the absence/presence of osteogenic factors. J Biomedical Opt 2013; 18: 128-136. [DOI:10.1117/1.JBO.18.12.128006] [PMID]
25. [25] Bayram H, Kenar H, Tasar F, Hasirci V. Effect of low level laser therapy and zoledronate on the viability and ALP activity of Saos-2 cells. Int J Oral Maxillofacial Surg 2013; 42: 140-146. [DOI:10.1016/j.ijom.2012.03.026] [PMID]
26. [26] Stein E, Koehn J, Sutter W, Schmidl C, Lezaic V, Wendtlandt G, et al. Phenothiazine chloride and soft laser light have a biostimulatory effect on human osteoblastic cells. Photomed Laser Surg 2009; 27: 71-77. [DOI:10.1089/pho.2008.2265] [PMID]
27. [27] Chellini F, Sassoli C, Nosi D, Deledda C, Tonelli P, Zecchi-Orlandini S, et al. Low pulse energy Nd:YAG laser irradiation exerts a biostimulative effect on different cells of the oral microenvironment: "an in vitro study". Lasers Surg Med 2010; 42: 527-539. [DOI:10.1002/lsm.20861] [PMID]
28. [28] Pyo SJ, Song WW, Kim IR, Park BS, Kim CH, Shin SH, et al. Low-level laser therapy induces the expressions of BMP-2, osteocalcin, and TGF-beta1 in hypoxic-cultured human osteoblasts. Lasers Med Sci 2013; 28: 543-550. [DOI:10.1007/s10103-012-1109-0] [PMID]
29. [29] Medina-Huertas R, Manzano-Moreno FJ, De Luna-Bertos E, Ramos-Torrecillas J, Garcia-Martinez O, Ruiz C. The effects of low-level diode laser irradiation on differentiation, antigenic profile, and phagocytic capacity of osteoblast-like cells (MG-63). Laser Med Sci 2014; 29: 1479-1484. [DOI:10.1007/s10103-014-1557-9] [PMID]
30. [30] Kara C, Selamet H, Gökmenoğlu C, Kara N. Low level laser therapy induces increased viability and proliferation in isolated cancer cells. Cell Prolif 2018; 51: e12417. [DOI:10.1111/cpr.12417] [PMID] [PMCID]
31. [31] Guo Q, Xia Y, Sandig M, Yang J. Characterization of cell elasticity correlated with cell morphology by atomic force microscope. J Biomech 2012; 45: 304-309. [DOI:10.1016/j.jbiomech.2011.10.031] [PMID]
32. [32] Ghazanfari S, Tafazzoli-Shadpour M, Shokrgozar MA. Effects of cyclic stretch on proliferation of mesenchymal stem cells and their differentiation to smooth muscle cells. Biochem Biophys Res Commun 2009; 388: 601-605. [DOI:10.1016/j.bbrc.2009.08.072] [PMID]
33. [33] Garcı́a R, Pérez R. Dynamic atomic force microscopy methods. Surf Sci Rep 2002; 47: 197-301. [DOI:10.1016/S0167-5729(02)00077-8]
34. [34] Rubin E, Davis S, Bucher I. Multidimensional topography sensing simulating an AFM. Sens Actuat A: Physical 2020; 303: 111690. [DOI:10.1016/j.sna.2019.111690]
35. [35] Györgyey Á, Ungvári K, Kecskeméti G, Kopniczky J, Hopp B, Oszkó A, et al. Attachment and proliferation of human osteoblast-like cells (MG-63) on laser-ablated titanium implant material. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl 2013; 33: 4251-4259. [DOI:10.1016/j.msec.2013.06.020] [PMID]
36. [36] Incerti Parenti S, Checchi L, Fini M, Tschon M. Different doses of low-level laser irradiation modulate the in vitro response of osteoblast-like cells. J Biomed Opt 2014; 19: 108002. [DOI:10.1117/1.JBO.19.10.108002] [PMID]
37. [37] Mikami R, Mizutani K, Aoki A, Tamura Y, Aoki K, Izumi Y. Low-level ultrahigh-frequency and ultrashort-pulse blue laser irradiation enhances osteoblast extracellular calcification by upregulating proliferation and differentiation via transient receptor potential vanilloid 1. Lasers Surg Med 2018; 50: 340-352. [DOI:10.1002/lsm.22775] [PMID]
38. [38] Mohammadkarim A, Mokhtari-Dizaji M, Kazemian A, Saberi H, Khani MM, Bakhshandeh. Cell biochem biophys. dose-dependent 60Co γ-radiation effects on human endothelial cell mechanical properties. Cell Biochem Biophys 2019; 77: 179-186. [DOI:10.1007/s12013-018-0864-3] [PMID]
39. [39] Mohammadkarim A, Mokhtari-Dizaji M, Kazemian A, Saberi H, Khani MM, Bakhshandeh. The mechanical characteristics of human endothelial cells in response to single ionizing radiation by using micropipette aspiration technique. MCB Mol Cell Biomech 2019; 16: 275-287. [DOI:10.32604/mcb.2019.06280]
40. [40] Merigo E, Bouvet-Gerbettaz S, Boukhechba F, Rocca JP, Fornaini C, Rochet NJ, Biology PB. Green laser light irradiation enhances differentiation and matrix mineralization of osteogenic cells. J Photochem Photobiol B 2016; 155: 130-136. [DOI:10.1016/j.jphotobiol.2015.12.005] [PMID]
41. [41] Schwartz-Filho HO, Reimer AC, Marcantonio C, Marcantonio E Jr., Marcantonio RA. Effects of low-level laser therapy (685 nm) at different doses in osteogenic cell cultures. Lasers Med Sci 2011; 26: 539-543. [DOI:10.1007/s10103-011-0902-5] [PMID]
42. [42] Guz NV, Dokukin ME, Woodworth CD, Cardin A, Sokolov I. Towards early detection of cervical cancer: Fractal dimension of AFM images of human cervical epithelial cells at different stages of progression to cancer. Nanomedicine 2015; 11: 1667-1675. [DOI:10.1016/j.nano.2015.04.012] [PMID] [PMCID]
43. [43] Betancourt-Mar JA, Llanos-Pérez JA, Cocho G, Mansilla R, Martin RR, Montero S, Nieto-Villar JM. Phase transitions in tumor growth: IV relationship between metabolic rate and fractal dimension of human tumor cells. Phys A Stat Mechanic Appl 2017; 473: 344-351. [DOI:10.1016/j.physa.2016.12.089]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA

Ethics code: IR.SEMUMS.1398.185


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Barati Shoorche A, Mohammadkarim A, Jadidi M, Bahraminasab M, Sameni H R. Fractal dimension analysis and surface topography mapping to investigate the effects of low-level laser therapy on the physical behavior of osteosarcoma MG-63 cells. Koomesh. 2021; 23 (5) :548-555
URL: http://koomeshjournal.semums.ac.ir/article-1-6839-fa.html

براتی شورچه امین، محمدکریم علیرضا، جدیدی مجید، بهرامی نسب مرجان، ثامنی حمیدرضا. تحلیل بعد فرکتال و نقشه‌برداری توپوگرافی سطحی به منظور بررسی اثرات درمانی پرتوهای لیزر کم‌توان بر رفتار فیزیکی سلول‌های استئوسارکوما رده MG-63. كومش. 1400; 23 (5) :548-555

URL: http://koomeshjournal.semums.ac.ir/article-1-6839-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
جلد 23، شماره 5 - ( مهر و آبان 1400 ) برگشت به فهرست نسخه ها
کومش Koomesh
Persian site map - English site map - Created in 0.04 seconds with 30 queries by YEKTAWEB 4341