اکثر مکاتبات کومش از طریق ایمیل سایت می باشد.
لطفا Spam ایمیل خود را نیز چک نمایید.
   [صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: جلد 23، شماره 1 - ( زمستان 1399 ) ::
جلد 23 شماره 1 صفحات 124-130 برگشت به فهرست نسخه ها
اثر استرس کشت در محیط فاقد سرم بر نتایج کشت مختلط سلول‌های تک هسته‌ای طحال موش: معرفی تعدیل‌گر ایمنی جدید
گیلدا پارسامنش ، مریم مهری ، مصطفی شیخ زاده ، سید حسین موسوی انیجدان ، امراله مصطفی زاده
چکیده:   (338 مشاهده)
هدف: پیوند مغز ‌استخوان و سلولهای ایمنی یک روش رایج برای درمان برخی از بیماری‌های خونی در سراسر جهان است. با این حال به دلیل بدتنظیمی سیستم ایمنی استفاده از آن همیشه کارآمد نمی‌باشد. در این مطالعه برآنیم تا پتانسیل استرس کشت در محیط فاقد سرم را در تنظیم سیستم ایمنی ارزیابی کنیم.
مواد و روشها: سلول‌های تک هسته‌ای طحال با استفاده از روش گرادیان فایکول از موش‌های Balb/C و C57bl/6 جدا شدند. سلول‌های موش C57bl/6 در شرایط دارای سرم و فاقد سرم در نقاط زمانی مشخص کشت یافتند و میزان بقاء سلول‌ها به روش MTT تعیین گردید. سپس جهت تعیین آلوژنیسیته‌ی سلول‌های مذکور، کشت مختلط لنفوسیتی (مدل آزمایشگاهی پیوند) با سلول‌های طحال موش Balb/C انجام شد و با استفاده از روش MTT تکثیر سلولی مورد بررسی قرار گرفت و عکس‌های لازم تهیه گردید.
یافتهها: میزان بقاء سلول‌های ایمنی پس از 72 ساعت کشت در محیط فاقد سرم نسبت به گروه کنترل 1/82% بود. هم‌چنین پس از 24 ساعت، آلوژنیسیته‌ی این سلول‌ها نسبت به سلول‌‌‌های کنترل به‌طور معنی‌داری کاهش یافت (01/0P<). این کاهش در نقاط زمانی 48و 72 ساعت بارزتر شد (0001/0P<)؛ به میزانی که پاسخ لنفوسیت‌های موش Balb/C به سلول‌های استرس یافته کم‌تر از سلول‌هایی بوده است که هیچ‌گونه محرکی دریافت نکرده‌اند (0001/0P<). یافته‌های مورفولوژی به وضوح این کاهش را تائید می‌کنند.
نتیجهگیری: استرس ناشی از کشت در محیط فاقد سرم موجب کاهش آلوژنیسیته و تعدیل آلوری اکتیویتی سلول‌های ایمنی می‌شود. در آینده استفاده ازمدل‌ حیوانی موش می‌تواند کاربرد این تکنیک را در پیوند مغز استخوان روشن‌تر سازد.
 
واژه‌های کلیدی: پیوند، تکنیک کشت سلول، موش، تنظیم ایمنی
متن کامل [PDF 727 kb]   (58 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: 1398/10/5 | پذیرش: 1399/4/4 | انتشار: 1399/11/4
فهرست منابع
1. [1] Dai H, Wang Y, Lu X, Han W. Chimeric antigen receptors modified T-cells for cancer therapy. J Natl Cancer Inst 2016; 108. [DOI:10.1093/jnci/djv439] [PMID] [PMCID]
2. [2] Petersdorf EW. Role of major histocompatibility complex variation in graft-versus-host disease after hematopoietic cell transplantation. F1000Res 2017; 6: 617. [DOI:10.12688/f1000research.10990.1] [PMID] [PMCID]
3. [3] Pakos‐Zebrucka K. Koryga I, Mnich K, Ljujic M, Samali A, Gorman AM. The integrated stress response. EMBO Rep 2016; 17: 1374-1395. [DOI:10.15252/embr.201642195] [PMID] [PMCID]
4. [4] Costa-Mattioli M, Walter P. The integrated stress response: From mechanism to disease. Science 2020; 80: 368. [DOI:10.1126/science.aat5314] [PMID]
5. [5] Klassen J. The role of photopheresis in the treatment of graft-versus-host disease. Curr Oncol 2010; 17: 55. [DOI:10.3747/co.v17i2.565] [PMID] [PMCID]
6. [6] Borzoueisileh S, Monfared AS, Abediankenari S, Mostafazadeh A. The assessment of cytotoxic T cell and natural killer cells activity in residents of high and ordinary background radiation areas of Ramsar-Iran. J Med Phys Assoc Med Phys India 2013; 38: 30. [DOI:10.4103/0971-6203.106602] [PMID] [PMCID]
7. [7] Borzoueisileh S, Monfared AS, Abediankenari S, Mostafazadeh A, Khosravifarsani M, Amiri M, Elahimanesh F. The comparison of CD4/CD8 ratio among high and ordinary background radiation areas in Ramsar, Iran. Int J Low Radiat 2011; 8: 329-337. [DOI:10.1504/IJLR.2011.046531]
8. [8] Shin JT, Opalenik SR, Wehby JN, Mahesh VK, Jackson A, Tarantini F, et al. Serum-starvation induces the extracellular appearance of FGF-1. Biochim Biophys Acta (BBA)-Mol Cell Res 1996; 1312: 27-38. [DOI:10.1016/0167-4889(96)00013-4]
9. [9] Vasudevan S, Steitz JA. AU-rich-element-mediated upregulation of translation by FXR1 and Argonaute 2. Cell 2007; 128: 1105-1118. [DOI:10.1016/j.cell.2007.01.038] [PMID] [PMCID]
10. [10] González-Polo RA, Boya P, Pauleau AL, Jalil A, Larochette N, Souquère S, et al. The apoptosis/autophagy paradox: autophagic vacuolization before apoptotic death. J Cell Sci 2005; 118: 3091-3102. [DOI:10.1242/jcs.02447] [PMID]
11. [11] Ni P, Xu H, Chen C, Wang J, Liu X, Hu Y, et al. Serum starvation induces DRAM expression in liver cancer cells via histone modifications within its promoter locus. PLoS One 2012; 7: e50502. [DOI:10.1371/journal.pone.0050502] [PMID] [PMCID]
12. [12] Chen M, Huang J, Yang X, Liu B, Zhang W, Huang L, et al. Serum starvation induced cell cycle synchronization facilitates human somatic cells reprogramming. PLoS One 2012; 7: e28203. [DOI:10.1371/journal.pone.0028203] [PMID] [PMCID]
13. [13] Britain CM, Dorsett KA, Bellis SL. The glycosyltransferase ST6Gal-I protects tumor cells against serum growth factor withdrawal by enhancing survival signaling and proliferative potential. J Biol Chem 2017; 292: 4663-4673. [DOI:10.1074/jbc.M116.763862] [PMID] [PMCID]
14. [14] Tian X, Huang B, Zhang XP, Lu M, Liu F, Onuchic JN, Wang W. Modeling the response of a tumor-suppressive network to mitogenic and oncogenic signals. Proc Natl Acad Sci 2017; 114: 5337-5342. [DOI:10.1073/pnas.1702412114] [PMID] [PMCID]
15. [15] Rahmani M, Khorasani HR, Golpour M, Shabestani Monfared A, Nattaj H, Abedian S, Mostafazadeh A. Stable down-regulation of HLA class-I by serum starvation in human PBMCs. Iran J Immunol 2016; 13: 54-63. (Persian).
16. [16] Rahmani M, Mohammadnia-Afrouzi M, Nouri HR, Fattahi S, Akhavan-Niaki H, Mostafazadeh A. Human PBMCs fight or flight response to starvation stress: Increased T-reg, FOXP3, and TGF-β1 with decreased miR-21 and Constant miR-181c levels, Biomed. Pharmacother 2018; 108: 1404-1411. [DOI:10.1016/j.biopha.2018.09.163] [PMID]
17. [17] Nami S, Aghebati-Maleki A, Babaloo Z, Aghebati-Maleki L. Effects of fasting on the immune system function and its positive effects on the chemotherapy of various types of cancer. Koomesh 2020; 22: 404-410. (Persian) [DOI:10.29252/koomesh.22.3.404]
18. [18] Kandoi S, Patra B, Vidyasekar P, Sivanesan D, Vijayalakshmi S, Rajagopal K, Verma RS. Evaluation of platelet lysate as a substitute for FBS in explant and enzymatic isolation methods of human umbilical cord MSCs. Sci Rep 2018; 8: 1-12. [DOI:10.1038/s41598-018-30772-4] [PMID] [PMCID]
19. [19] Smith C, Miles JJ, Khanna R. Advances in direct T‐cell alloreactivity: function, avidity, biophysics and structure. Am J Transplant 2012; 12: 15-26. [DOI:10.1111/j.1600-6143.2011.03863.x] [PMID]
20. [20] Dong Y, Sun Q, Zhang X. PD-1 and its ligands are important immune checkpoints in cancer. Oncotarget 2017; 8: 2171. [DOI:10.18632/oncotarget.13895] [PMID] [PMCID]
21. [21] Püschel F, Favaro F, Redondo-Pedraza J, Lucendo E, Iurlaro R, Marchetti S, et al. Starvation and antimetabolic therapy promote cytokine release and recruitment of immune cells. Proc Natl Acad Sci 2020; 117: 9932-9941. [DOI:10.1073/pnas.1913707117] [PMID] [PMCID]
22. [22] Zou MX, Peng AB, Lv GH, Wang XB, Li J, She XL, Jiang Y. Expression of programmed death-1 ligand (PD-L1) in tumor-infiltrating lymphocytes is associated with favorable spinal chordoma prognosis. Am J Transl Res 2016; 8: 3274
23. [1] Dai H, Wang Y, Lu X, Han W. Chimeric antigen receptors modified T-cells for cancer therapy. J Natl Cancer Inst 2016; 108. [DOI:10.1093/jnci/djv439] [PMID] [PMCID]
24. [2] Petersdorf EW. Role of major histocompatibility complex variation in graft-versus-host disease after hematopoietic cell transplantation. F1000Res 2017; 6: 617. [DOI:10.12688/f1000research.10990.1] [PMID] [PMCID]
25. [3] Pakos‐Zebrucka K. Koryga I, Mnich K, Ljujic M, Samali A, Gorman AM. The integrated stress response. EMBO Rep 2016; 17: 1374-1395. [DOI:10.15252/embr.201642195] [PMID] [PMCID]
26. [4] Costa-Mattioli M, Walter P. The integrated stress response: From mechanism to disease. Science 2020; 80: 368. [DOI:10.1126/science.aat5314] [PMID]
27. [5] Klassen J. The role of photopheresis in the treatment of graft-versus-host disease. Curr Oncol 2010; 17: 55. [DOI:10.3747/co.v17i2.565] [PMID] [PMCID]
28. [6] Borzoueisileh S, Monfared AS, Abediankenari S, Mostafazadeh A. The assessment of cytotoxic T cell and natural killer cells activity in residents of high and ordinary background radiation areas of Ramsar-Iran. J Med Phys Assoc Med Phys India 2013; 38: 30. [DOI:10.4103/0971-6203.106602] [PMID] [PMCID]
29. [7] Borzoueisileh S, Monfared AS, Abediankenari S, Mostafazadeh A, Khosravifarsani M, Amiri M, Elahimanesh F. The comparison of CD4/CD8 ratio among high and ordinary background radiation areas in Ramsar, Iran. Int J Low Radiat 2011; 8: 329-337. [DOI:10.1504/IJLR.2011.046531]
30. [8] Shin JT, Opalenik SR, Wehby JN, Mahesh VK, Jackson A, Tarantini F, et al. Serum-starvation induces the extracellular appearance of FGF-1. Biochim Biophys Acta (BBA)-Mol Cell Res 1996; 1312: 27-38. [DOI:10.1016/0167-4889(96)00013-4]
31. [9] Vasudevan S, Steitz JA. AU-rich-element-mediated upregulation of translation by FXR1 and Argonaute 2. Cell 2007; 128: 1105-1118. [DOI:10.1016/j.cell.2007.01.038] [PMID] [PMCID]
32. [10] González-Polo RA, Boya P, Pauleau AL, Jalil A, Larochette N, Souquère S, et al. The apoptosis/autophagy paradox: autophagic vacuolization before apoptotic death. J Cell Sci 2005; 118: 3091-3102. [DOI:10.1242/jcs.02447] [PMID]
33. [11] Ni P, Xu H, Chen C, Wang J, Liu X, Hu Y, et al. Serum starvation induces DRAM expression in liver cancer cells via histone modifications within its promoter locus. PLoS One 2012; 7: e50502. [DOI:10.1371/journal.pone.0050502] [PMID] [PMCID]
34. [12] Chen M, Huang J, Yang X, Liu B, Zhang W, Huang L, et al. Serum starvation induced cell cycle synchronization facilitates human somatic cells reprogramming. PLoS One 2012; 7: e28203. [DOI:10.1371/journal.pone.0028203] [PMID] [PMCID]
35. [13] Britain CM, Dorsett KA, Bellis SL. The glycosyltransferase ST6Gal-I protects tumor cells against serum growth factor withdrawal by enhancing survival signaling and proliferative potential. J Biol Chem 2017; 292: 4663-4673. [DOI:10.1074/jbc.M116.763862] [PMID] [PMCID]
36. [14] Tian X, Huang B, Zhang XP, Lu M, Liu F, Onuchic JN, Wang W. Modeling the response of a tumor-suppressive network to mitogenic and oncogenic signals. Proc Natl Acad Sci 2017; 114: 5337-5342. [DOI:10.1073/pnas.1702412114] [PMID] [PMCID]
37. [15] Rahmani M, Khorasani HR, Golpour M, Shabestani Monfared A, Nattaj H, Abedian S, Mostafazadeh A. Stable down-regulation of HLA class-I by serum starvation in human PBMCs. Iran J Immunol 2016; 13: 54-63. (Persian).
38. [16] Rahmani M, Mohammadnia-Afrouzi M, Nouri HR, Fattahi S, Akhavan-Niaki H, Mostafazadeh A. Human PBMCs fight or flight response to starvation stress: Increased T-reg, FOXP3, and TGF-β1 with decreased miR-21 and Constant miR-181c levels, Biomed. Pharmacother 2018; 108: 1404-1411. [DOI:10.1016/j.biopha.2018.09.163] [PMID]
39. [17] Nami S, Aghebati-Maleki A, Babaloo Z, Aghebati-Maleki L. Effects of fasting on the immune system function and its positive effects on the chemotherapy of various types of cancer. Koomesh 2020; 22: 404-410. (Persian) [DOI:10.29252/koomesh.22.3.404]
40. [18] Kandoi S, Patra B, Vidyasekar P, Sivanesan D, Vijayalakshmi S, Rajagopal K, Verma RS. Evaluation of platelet lysate as a substitute for FBS in explant and enzymatic isolation methods of human umbilical cord MSCs. Sci Rep 2018; 8: 1-12. [DOI:10.1038/s41598-018-30772-4] [PMID] [PMCID]
41. [19] Smith C, Miles JJ, Khanna R. Advances in direct T‐cell alloreactivity: function, avidity, biophysics and structure. Am J Transplant 2012; 12: 15-26. [DOI:10.1111/j.1600-6143.2011.03863.x] [PMID]
42. [20] Dong Y, Sun Q, Zhang X. PD-1 and its ligands are important immune checkpoints in cancer. Oncotarget 2017; 8: 2171. [DOI:10.18632/oncotarget.13895] [PMID] [PMCID]
43. [21] Püschel F, Favaro F, Redondo-Pedraza J, Lucendo E, Iurlaro R, Marchetti S, et al. Starvation and antimetabolic therapy promote cytokine release and recruitment of immune cells. Proc Natl Acad Sci 2020; 117: 9932-9941. [DOI:10.1073/pnas.1913707117] [PMID] [PMCID]
44. [22] Zou MX, Peng AB, Lv GH, Wang XB, Li J, She XL, Jiang Y. Expression of programmed death-1 ligand (PD-L1) in tumor-infiltrating lymphocytes is associated with favorable spinal chordoma prognosis. Am J Transl Res 2016; 8: 3274
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA

Ethics code: MUBABOL.REC.1394.82



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Parsamanesh G, Mehri M, sheikhzadeh M, Mousavie Anijdan S H, Mostafazadeh A. Effect of serum starvation stress on the mouse spleen mononuclear cells mixed culture: Introducing a new immunomodulatory method. Koomesh. 2021; 23 (1) :124-130
URL: http://koomeshjournal.semums.ac.ir/article-1-6096-fa.html

پارسامنش گیلدا، مهری مریم، شیخ زاده مصطفی، موسوی انیجدان سید حسین، مصطفی زاده امراله. اثر استرس کشت در محیط فاقد سرم بر نتایج کشت مختلط سلول‌های تک هسته‌ای طحال موش: معرفی تعدیل‌گر ایمنی جدید. كومش. 1399; 23 (1) :124-130

URL: http://koomeshjournal.semums.ac.ir/article-1-6096-fa.html



جلد 23، شماره 1 - ( زمستان 1399 ) برگشت به فهرست نسخه ها
کومش Koomesh
Persian site map - English site map - Created in 0.06 seconds with 30 queries by YEKTAWEB 4256